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血紅蛋白的提取和分離

更新時(shí)間:2016/8/23 13:57:00  手機(jī)版

  血紅蛋白的提取和分離:

  1、實(shí)驗(yàn)原理

  蛋白質(zhì)的物化理性質(zhì):形狀、大小、電荷性質(zhì)和多少、溶解度、吸附性質(zhì)、親和力等千差萬別,由此提取和分離各種蛋白質(zhì)。

 。1)凝膠色譜法(分配色譜法):

 、僭恚悍肿恿看蟮姆肿油ㄟ^多孔凝膠顆粒的間隙,路程短,流動(dòng)快;分子量小的分子穿過多孔凝膠顆粒內(nèi)部,路程長,流動(dòng)慢。

 、谀z材料:多孔性,多糖類化合物,如葡聚糖、瓊脂糖。

 、鄯蛛x過程:

  混合物上柱→洗脫→大分子流動(dòng)快、小分子流動(dòng)慢→收集大分子→收集小分子

  洗脫:從色譜柱上端不斷注入緩沖液,促使蛋白質(zhì)分子的差速流動(dòng)。

 、茏饔茫 分離蛋白質(zhì),測定生物大分子分子量,蛋白質(zhì)的脫鹽等。

 。2)緩沖溶液

 、僭恚河扇跛岷拖鄳(yīng)的強(qiáng)堿弱酸鹽組成(如H2CO3—NaHCO3, NaH2PO4/Na2HPO4等),調(diào)節(jié)酸和鹽的用量,可配制不同pH的緩沖液。

  ②緩沖液作用:抵制外界酸、堿對溶液pH的干擾而保持pH穩(wěn)定。

  (3)凝膠電泳法:

 、僭恚翰煌鞍踪|(zhì)的帶電性質(zhì)、電量、形狀和大小不同,在電場中受到的作用力大小、方向、阻力不同,導(dǎo)致不同蛋白質(zhì)在電場中的運(yùn)動(dòng)方向和運(yùn)動(dòng)速度不同。

 、诜蛛x方法:瓊脂糖凝膠電泳、聚丙烯酰胺凝膠電泳等。

 、鄯蛛x過程:在一定pH下,使蛋白質(zhì)基團(tuán)帶上正電或負(fù)電;加入帶負(fù)電荷多的SDS,形成“蛋白質(zhì)—SDS復(fù)合物”,使蛋白質(zhì)遷移速率僅取決于分子大小。

  2、實(shí)驗(yàn)步驟

 。1)樣品處理

 、 紅細(xì)胞的洗滌

  洗滌紅細(xì)胞的目的是去除雜蛋白,采集的血樣要及時(shí)采用低速短時(shí)間離心分離紅細(xì)胞,然后用膠頭吸管吸出上層透明的黃色血漿,將下層暗紅色的紅細(xì)胞液體倒入燒杯,再加入五倍體積的生理鹽水,緩慢攪拌10min,低速短時(shí)間離心,如此重復(fù)洗滌三次,直至上清液中沒有黃色,表明紅細(xì)胞已洗滌干凈。

 、谘t蛋白的釋放

  在蒸餾水和甲苯作用下,紅細(xì)胞破裂釋放出血紅蛋白。

  注:加入蒸餾水后紅細(xì)胞液體積與原血液體積要相同。加入甲苯的目的是溶解細(xì)胞膜,有利于血紅蛋白的釋放和分離。

 。2)粗分離

 、俜蛛x血紅蛋白溶液

  將攪拌好的混合溶液離心后,試管中的溶液分為4層。第一層為無色透明的甲苯層,第2層為白色薄層固體,是脂溶性物質(zhì)的沉淀層,第3層是紅色透明液體,這是血紅蛋白的水溶液,第4層是其他雜質(zhì)的暗紅色沉淀物。將試管中的液體用濾紙過濾,除去之溶性沉淀層,于分液漏斗中靜置片刻后,分出下層的紅色透明液體。

  ②透析

  取1mL的血紅蛋白溶液裝入透析袋中,將透析袋放入盛有300mL的物質(zhì)的量的濃度為20mmol/L的磷酸緩沖液中,透析12h。透析可以去除樣品中分子量較小的雜質(zhì),或用于更換樣品的緩沖液。

  (3)純化:調(diào)節(jié)緩沖液面→加入蛋白質(zhì)樣品→調(diào)節(jié)緩沖液面→洗脫→收集分裝蛋白質(zhì)

 。4)純度鑒定——SDS聚丙烯酰胺凝膠電泳

  知識點(diǎn)撥:

  注意事項(xiàng)

  (1)電泳技術(shù)

  電泳技術(shù)就是在電場的作用下,利用待分離樣品中各種分子帶電性質(zhì)以及分子本身大小、形狀等性質(zhì)的差異,使帶電分子產(chǎn)生不同的遷移速度,從而達(dá)到對樣品進(jìn)行分離、鑒定或提純的目的。

  (2)紅細(xì)胞的洗滌

  如果分層不明顯,可能是洗滌次數(shù)少、未能除去血漿蛋白的原因。此外,離心速度過高和時(shí)間過長,會(huì)使白細(xì)胞和淋巴細(xì)胞一同沉淀,也得不到純凈的紅細(xì)胞,影響后續(xù)血紅蛋白的提取純度。

  (3)如何檢測凝膠色譜柱的裝填是否成功

  由于凝膠是一種半透明的介質(zhì),因此可以在凝膠柱旁放一支與凝膠柱垂直的日光燈,檢查凝膠是否裝填得均勻。

  此外,還可以加入大分子的有色物質(zhì),觀察色帶移動(dòng)的情況。如果色帶均勻、狹窄、平整,說明凝膠色譜柱的性能良好。如果色譜柱出現(xiàn)紋路或是氣泡,輕輕敲打柱體以消除氣泡,消除不了時(shí)要重新裝柱。

  (4)為什么凝膠的裝填要緊密、均勻?

  如果凝膠裝填得不夠緊密、均勻,就會(huì)在色譜柱內(nèi)形成無效的空隙,使本該進(jìn)入凝膠內(nèi)部的樣品分子從這些空隙中通過,攪亂洗脫液的流動(dòng)次序,影響分離的效果。

 。5)沸水浴處理加入洗脫液的濕凝膠的目的

  不但節(jié)約時(shí)間,還能除去凝膠中可能帶有的微生物和排除凝膠內(nèi)的空氣。

  (6)G-75

  “G”代表凝膠的交聯(lián)程度,膨脹程度及分離范圍,75表示凝膠得水值,即每克凝膠膨脹時(shí)吸水7.5g。

 。7)裝填完后,立即用洗脫液洗脫的目的:使凝膠裝填緊密

 。8)加入檸檬酸鈉有何目的?為什么要低速、短時(shí)離心?為什么要緩慢攪拌?

  防止血液凝固;防止白細(xì)胞沉淀;防止紅細(xì)胞破裂釋放出血紅蛋白。

  (9)與其他真核細(xì)胞相比,紅細(xì)胞的特點(diǎn)及這一特點(diǎn)對進(jìn)行蛋白質(zhì)的分離的意義

  哺乳動(dòng)物及人的成熟的紅細(xì)胞是雙面凹圓餅狀,沒有細(xì)胞核和細(xì)胞器。其含有的血紅蛋白是有色蛋白,因此在凝膠色譜分離時(shí)可以通過觀察顏色來判斷什么時(shí)候應(yīng)該收集脫液。這使血紅蛋白的分離過程非常直觀,大大簡化了實(shí)驗(yàn)操作。

 。10)如何檢測血紅蛋白的分離是否成功

  如果凝膠色譜柱裝填得很成功、分離操作也正確的話,能清楚地看到血紅蛋白的紅色區(qū)帶均勻、狹窄、平整,隨著洗脫液緩慢流出;如果紅色區(qū)帶歪曲、散亂、變寬,說明分離的效果不好,這與凝膠色譜柱的裝填有關(guān)。

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